Desempeño de McMaster y Mini-Flotac en el diagnóstico de Paramphistomum spp. en bovinos

  • Enrique Casado Simón Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad de Camagüey Ignacio Agramonte Loynaz, Camagüey, Cuba. https://orcid.org/0000-0002-0894-1978
  • Marbelys González Salotén Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad de Camagüey Ignacio Agramonte Loynaz, Camagüey, Cuba. https://orcid.org/0000-0001-5822-622X
  • Arnielis Díaz Fernández Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad de Camagüey Ignacio Agramonte Loynaz, Camagüey, Cuba. https://orcid.org/0000-0002-3561-9845
  • Zaul Gutiérrez Lastra Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad de Camagüey Ignacio Agramonte Loynaz, Camagüey, Cuba. https://orcid.org/0000-0003-0099-1089
  • Julio Madera Quintana Vicerrectoría de Informatización, Universidad de Camagüey Ignacio Agramonte Loynaz, Camagüey, Cuba. https://orcid.org/0000-0001-5551-690X
  • Amilcar Arenal Cruz Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad de Camagüey Ignacio Agramonte Loynaz, Camagüey, Cuba. https://orcid.org/0000-0003-2912-9871
Palabras clave: diagnóstico, exactitud, Paramphistomum, prevalencia

Resumen

Antecedentes: La Paramphistomosis es una enfermedad parasitaria emergente que causa cuantiosas pérdidas económicas, su diagnóstico es muy difícil. El objetivo del presente estudio fue evaluar el desempeño de las técnicas coprológicas McMaster y Mini- FLOTAC en el diagnóstico de Paramphistomum de muestras provenientes de bovinos.

Métodos: Se analizó la recuperación de huevos de Paramphistomum de McMaster y Mini-Flotac en muestras de heces de bovinos con cantidades conocidas de hpg. Se emplearon diferentes soluciones de flotación de ZnCl2 y ZnSO4, ambas con densidades de 1,45 y 1,50 mg/mL. Posteriormente se determinó el desempeño de McMaster y Mini- Flotac en muestras de heces de bovinos destinados al sacrificio (n=40); y otras provenientes de rebaños lecheros (n=155).

Resultados: Se obtuvieron similares exactitudes en la recuperación de huevos en ambas técnicas para hpg conocidos en diferentes soluciones de flotación (59-77 %). La precisión fue similar tanto en McMaster (16,93-25,83 %) y Mini-Flotac (17,83-25,05 %). Se observó linealidad de los conteos de hpg entre McMaster y Mini-Flotac tanto en muestras de heces de bovinos al sacrificio (R2=0,93), como de muestras de rebaños lecheros (R2=0,71). Las prevalencias de Paramphistomum en rebaños lecheros fueron 42,9 % con McMaster y 43,5 % con Mini- FLOTAC.

Conclusiones: Ambas técnicas coprológicas tienen alta precisión y recuperación en la detección de huevos de Paramphistomum en heces de bovinos, lo que indica la aplicabilidad para el diagnóstico parasitológico.

Descargas

La descarga de datos todavía no está disponible.

Citas

Barda, B. D., Rinaldi, L., Ianniello, D., Zepherine, H., Salvo, F., Sadutshang, T., ... & Albonico, M. (2013). Mini-FLOTAC, an innovative direct diagnostic technique for intestinal parasitic infections: experience from the field. PLoS neglected tropical diseases, 7(8). DOI: 10.1371/journal.pntd.0002344

Bosco, A. (2014). The coprological diagnosis of gastrointestinal nematode infections in small ruminants (Doctoral dissertation, PhD Thesis. Università degli Studi di Napoli Federico II, Napoli, Italia). https://scholar.google.com/scholar?cluster=8947850278994057232&hl=es&as_sdt=0,5

Cringoli, G., Rinaldi, L., Maurelli, M. P., & Utzinger, J. (2010). FLOTAC: new multivalent techniques for qualitative and quantitative copromicroscopic diagnosis of parasites in animals and humans. Nature protocols, 5(3), 503-515. https://www.unboundmedicine.com/medline/citation/20203667/FLOTAC:_new_multivalent_techniques_for_qualitative_and_quantitative_copromicroscopic_diagnosis_of_parasites_in_animals_and_humans_

Cringoli, G., Rinaldi, L., Veneziano, V., Capelli, G., & Scala, A. (2004). The influence of flotation solution, sample dilution and the choice of McMaster slide area (volume) on the reliability of the McMaster technique in estimating the faecal egg counts of gastrointestinal strongyles and Dicrocoelium dendriticum in sheep. Veterinary parasitology, 123(1-2), 121-131. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2004.05.021

De Castro, L. L. D., Abrahão, C. L., Buzatti, A., Molento, M. B., Bastianetto, E., Rodrigues, D. S., ... & de Almeida Borges, F. (2017). Comparison of McMaster and Mini-FLOTAC fecal egg counting techniques in cattle and horses. Veterinary Parasitology: Regional Studies and Reports, 10, 132-135. https://doi.org/10.1016/j.vprsr.2017.10.003

Eysker, M., & Ploeger, H. W. (2000). Value of present diagnostic methods for gastrointestinal nematode infections in ruminants. Parasitology, 120(7), 109-119. DOI: https://doi.org/10.1017/S0031182099005752

Glinz, D., Silué, K. D., Knopp, S., Lohourignon, L. K., Yao, K. P., Steinmann, P., ... & Utzinger, J. (2010). Comparing diagnostic accuracy of Kato-Katz, Koga agar plate, ether-concentration, and FLOTAC for Schistosoma mansoni and soil-transmitted helminths. PLoS neglected tropical diseases, 4(7). https://www.cabdirect.org/cabdirect/abstract/20103244486

Godber, O. F., Phythian, C. J., Bosco, A., Ianniello, D., Coles, G., Rinaldi, L., & Cringoli, G. (2015). A comparison of the FECPAK and Mini-FLOTAC faecal egg counting techniques. Veterinary parasitology, 207(3-4), 342-345. https://pubag.nal.usda.gov/catalog/5353178

Kifleyohannes, T., Kebede, E., Hagos, Y., Weldu, K., & Michael, M. G. (2015). Prevalence of Paramphistomosis in Ruminants in Ashenge, Tigray Ethiopia. Acta Parasitologica Globalis, 6(2), 83-86. https://scholar.google.com/scholar?cluster=11222483539226911862&hl=es&as_sdt=0,5

Noel, M. L., Scare, J. A., Bellaw, J. L., & Nielsen, M. K. (2017). Accuracy and precision of mini-FLOTAC and McMaster techniques for determining equine strongyle egg counts. Journal of Equine Veterinary Science, 48, 182-187. DOI: 10.1016/j.jevs.2016.09.006

Ojeda-Robertos, N. F., Medina-Reynes, A., Garduza-Arias, G., & Rangel-Ruiz, L. J. (2014). Dinámica de excreción de huevos de Fasciola hepatica y Paramphistomum spp en ganado bovino de Tabasco. Ecosistemas y recursos agropecuarios, 1(1), 73-80. http://www.scielo.org.mx/scielo.php?pid=S200790282014000100008&script=sci_arttext&tlng=en

Pinedo, V., Chávez, V., Casas, A., Suárez, A., Sánchez, P., & Huamán, U. (2010). Prevalencia de trematodes de la familia Paramphistomatidae en bovinos del distrito de Yurimaguas, provincia de alto Amazonas, Loreto. Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú, 21(2), 161-167. http://www.scielo.org.pe/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1609-91172010000200003

Piña, D., 2013. Paramphistomosis bovina. Título de Médico Veterinario Zootecnista. Universidad de Cuenca, Ecuador.

Ploeger, F., Abalos, M., Birner, T., Konopka, P., Legras, B., Müller, R., & Riese, M. (2015). Quantifying the effects of mixing and residual circulation on trends of stratospheric mean age of air. Geophysical Research Letters, 42(6), 2047-2054. https://ui.adsabs.harvard.edu/abs/2015EGUGA..17.7029P/abstract

Rangel-Ruiz, L. J., Albores-Brahms, S. T., & Gamboa-Aguilar, J. (2003). Seasonal trends of Paramphistomum cervi in Tabasco, Mexico. Veterinary parasitology, 116(3), 217-222. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2003.07.002

Rieu, E., Recca, A., Bénet, J. J., Saana, M., Dorchies, P., & Guillot, J. (2007). Reliability of coprological diagnosis of Paramphistomum sp. infection in cows. Veterinary parasitology, 146(3-4), 249-253. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2007.02.033

Rinaldi, L., Levecke, B., Bosco, A., Ianniello, D., Pepe, P., Charlier, J., ... & Vercruysse, J. (2014). Comparison of individual and pooled faecal samples in sheep for the assessment of gastrointestinal strongyle infection intensity and anthelmintic drug efficacy using McMaster and Mini-FLOTAC. Veterinary parasitology, 205(1-2), 216-223. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2014.06.011

Rojas, K., Serrano-Martínez, E., Tantaleán, M., Casas, G. C., & Quispe, M. (2015). Presencia de Cotylophoron sp en Bovinos de la Provincia de Moyobamba, Perú. Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú, 26(3), 519-524. http://www.scielo.org.pe/scielo.php?pid=S160991172015000300019&script=sci_arttext&tlng=pt

Silva, A. P. (2006). Paranfistomosis bovina: enfermedad emergente en el área mediterránea. In Veinte años de buiatría: actas del XIV Congreso Internacional de la Federación Mediterránea de Sanidad y Producción de Rumiantes, Lugo-Santiago de Compostela, 12-15 de julio de 2006 (pp. 19-23). Universidade de Santiago de Compostela. https://dialnet.unirioja.es/servlet/articulo?codigo=2336346

Silva, L. M. R., Vila-Viçosa, M. J. M., Maurelli, M. P., Morgoglione, M. E., Cortes, H. C. E., Cringoli, G., & Rinaldi, L. (2013). Mini-FLOTAC for the diagnosis of Eimeria infection in goats: an alternative to McMaster. Small ruminant research, 114(2-3), 280-283. https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2013.06.017

Vadlejch, J., Petrtýl, M., Zaichenko, I., Čadková, Z., Jankovská, I., Langrová, I., & Moravec, M. (2011). Which McMaster egg counting technique is the most reliable?. Parasitology research, 109(5), 1387-1394. https://link.springer.com/article/10.1007/s00436-011-2385

Vázquez, A. A., Sánchez, J., Alba, A., Pointier, J. P., & Hurtrez-Boussès, S. (2015). Natural prevalence in Cuban populations of the lymnaeid snail Galba cubensis infected with the liver fluke Fasciola hepatica: small values do matter. Parasitology research, 114(11), 4205-4210. https://link.springer.com/article/10.1007/s00436-015-4653-2

Publicado
2020-03-18
Cómo citar
Casado Simón, E., González Salotén, M., Díaz Fernández, A., Gutiérrez Lastra, Z., Madera Quintana, J., & Arenal Cruz, A. (2020). Desempeño de McMaster y Mini-Flotac en el diagnóstico de Paramphistomum spp. en bovinos. Revista De Producción Animal, 32(1). Recuperado a partir de https://revistas.reduc.edu.cu/index.php/rpa/article/view/e3407
Sección
Salud Animal